solo para uso en investigación
Cat. No.S7285
| Dianas relacionadas | Proteasome E1 Activating E3 Ligase DUB SUMO E2 conjugating |
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| Otros p97 Inhibidores | DBeQ CB-5339 ML240 NPD8733 |
| Líneas celulares | Tipo de ensayo | Concentración | Tiempo de incubación | Formulación | Descripción de la actividad | PMID |
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| Hi5 cells | Function assay | 20 mins | Inhibition of human recombinant His-GST tagged VCP expressed in baculovirus infected Hi5 cells assessed as ADP formation incubated for 20 mins proir to substrate addition measured after 90 mins by NADH coupled assay, IC50=0.024 μM | |||
| HCT116 cells | Cytotoxic assay | 72 h | Cytotoxicity against human HCT116 cells after 72 hrs by luciferase reporter gene assay, IC50=0.38 μM | |||
| Haga clic para ver más datos experimentales de líneas celulares | ||||||
| Peso molecular | 520.67 | Fórmula | C27H28N4O3S2 |
Almacenamiento (Desde la fecha de recepción) | |
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| Nº CAS | 1418013-75-8 | Descargar SDF | Almacenamiento de soluciones madre |
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| Sinónimos | N/A | Smiles | CC1=C(C=CC(=C1)OCC2=NN=C(N2C3=CN=CC=C3)SC4CCCC4)C5=CC=C(C=C5)S(=O)(=O)C | ||
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In vitro |
DMSO
: 100 mg/mL
(192.06 mM)
Water : Insoluble Ethanol : Insoluble |
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In vivo |
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Paso 1: Introduzca la información a continuación (Recomendado: Un animal adicional para tener en cuenta la pérdida durante el experimento)
Paso 2: Introduzca la formulación in vivo (Esto es solo la calculadora, no la formulación. Por favor, contáctenos primero si no hay una formulación in vivo en la sección de Solubilidad.)
Resultados del cálculo:
Concentración de trabajo: mg/ml;
Método para preparar el líquido maestro de DMSO: mg fármaco predissuelto en μL DMSO ( Concentración del líquido maestro mg/mL, Por favor, contáctenos primero si la concentración excede la solubilidad del DMSO del lote del fármaco. )
Método para preparar la formulación in vivo: Tomar μL DMSO líquido maestro, luego añadirμL PEG300, mezclar y clarificar, luego añadirμL Tween 80, mezclar y clarificar, luego añadir μL ddH2O, mezclar y clarificar.
Método para preparar la formulación in vivo: Tomar μL DMSO líquido maestro, luego añadir μL Aceite de maíz, mezclar y clarificar.
Nota: 1. Por favor, asegúrese de que el líquido esté claro antes de añadir el siguiente disolvente.
2. Asegúrese de añadir el (los) disolvente(s) en orden. Debe asegurarse de que la solución obtenida, en la adición anterior, sea una solución clara antes de proceder a añadir el siguiente disolvente. Se pueden utilizar métodos físicos como el vórtice, el ultrasonido o el baño de agua caliente para ayudar a la disolución.
| Características |
The most potent and specific p97 inhibitor described to date.
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|---|---|
| Targets/IC50/Ki |
p97
(Cell-free assay) 30 nM
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| In vitro |
NMS-873 reduce la sensibilidad de p97 a la digestión con tripsina, previniendo la degradación del dominio enlazador-D2. Este compuesto, como inhibidor de p97, produce actividad antiproliferativa en una variedad de líneas tumorales hematológicas y sólidas. El estudio del mecanismo indica que este químico activa la respuesta a proteínas desplegadas, interfiere con la autofagia y, por lo tanto, induce la muerte de células cancerosas.
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| Ensayo de quinasa |
Desarrollo de ensayos bioquímicos y HTS
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La actividad ATPasa y los parámetros cinéticos de la VCP recombinante de tipo salvaje y sus mutantes se evalúan monitorizando la formación de ADP en la reacción, utilizando un ensayo acoplado a NADH modificado. Dado que el ADP y el NADH son inhibidores competitivos de ATP de la actividad ATPasa de VCP, el protocolo estándar para el ensayo acoplado a NADH se modifica a un procedimiento de dos pasos. En la primera parte, un sistema regenerador de ATP (40 U/ml de piruvato quinasa y 3 mM de fosfoenolpiruvato) recicla el ADP producido por la actividad de VCP, mantiene la concentración del sustrato constante (evitando así la inhibición del producto) y acumula una cantidad estequiométrica de piruvato. En la segunda parte, la reacción enzimática de VCP se detiene con 30 mM de EDTA y 250 μM de NADH y se oxida estequiométricamente con 40 U/ml de lactato deshidrogenasa para reducir el piruvato acumulado. La disminución de la concentración de NADH se mide a 340 nm utilizando una placa lectora Tecan Safire 2. El ensayo se realiza en placas UV de 96 o 384 pocillos en un tampón de reacción con 50 mM de Hepes, pH 7,5, 0,2 mg/mL de BSA, 10 mM de MgCl2 y 2 mM de DTT. Los datos experimentales se ajustan con una ecuación cooperativa obteniendo un Ks* de aproximadamente 60 μM y un coeficiente de Hill (n) de 2,0 ± 0,1. La campaña HTS se realiza contra una biblioteca de 1 millón de compuestos utilizando un ensayo miniaturizado en formato de 1.536 pocillos y un sistema de detección de ADP más sensible, Transcreener ADP FP. Se realiza una preincubación de 20 minutos de 10 nM de VCP y 10 μM de inhibidor, después de lo cual se añaden 10 μM de ATP a la reacción, que se deja proceder durante 90 minutos antes de detenerla. El Z′ promedio del cribado es de 0,58, y la tasa de aciertos utilizando 3× d.e. (38 % de inhibición) como punto de corte es del 1,7 %. Los aciertos primarios con >60 % de inhibición a una concentración de 10 μM se depuran utilizando filtros fisicoquímicos y estructurales para dejar 7.516 compuestos. Al final, se realiza una reconfirmación por duplicado en 3.988 aciertos primarios, y se seleccionan 500 compuestos para una evaluación de dosis-respuesta utilizando el ensayo acoplado modificado con NADH descrito anteriormente. La potencia de los aciertos HTS más interesantes se mide tanto contra la VCP de tipo salvaje como contra el mutante C522T. Las concentraciones de ATP que produjeron la velocidad semimáxima (Ks*) para cada enzima, correspondientes a 60 μM y 130 μM para el tipo salvaje y el mutante C522T, respectivamente, se utilizan en el ensayo. Para explorar la dependencia de los inhibidores reversibles de la concentración del sustrato, su potencia se evalúa también a una concentración saturante de ATP (1 mM) y se compara con la potencia de un inhibidor competitivo estándar de ATP (AMP-PNP).
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Referencias |
Tel: +1-832-582-8158 Ext:3
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