Torin 1

N.º de catálogoS2827 Lote:S282705

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Datos técnicos

Fórmula

C35H28F3N5O2

Peso molecular 607.62 Número CAS 1222998-36-8
Solubilidad (25°C)* In vitro DMSO 3 mg/mL (4.93 mM)
Water Insoluble
Ethanol Insoluble
In vivo (Agregue los solventes al producto individualmente y en orden.)
Homogeneous suspension
CMC-NA
≥5mg/ml Taking the 1 mL working solution as an example, add 5 mg of this product to 1 ml of CMC-Na solution, mix evenly to obtain a homogeneous suspension with a final concentration of 5 mg/ml.
Clear solution
5%DMSO 40%PEG300 5%Tween80 50%ddH2O

Validado por los laboratorios Selleck. Si necesita ajustes en esta formulación, póngase en contacto con nuestro equipo de ventas para pruebas personalizadas.

0.200mg/ml (0.33mM) Taking the 1 mL working solution as an example, add 50 μL of 4 mg/ml clarified DMSO stock solution to 400 μL of PEG300, mix evenly to clarify it; add 50 μL of Tween80 to the above system, mix evenly to clarify; then continue to add 500 μL of ddH2O to adjust the volume to 1 mL. The mixed solution should be used immediately for optimal results. 
* <1 mg/ml significa ligeramente soluble o insoluble.
* Tenga en cuenta que Selleck prueba la solubilidad de todos los compuestos internamente, y la solubilidad real puede diferir ligeramente de los valores publicados. Esto es normal y se debe a ligeras variaciones entre lotes.
* Envío a temperatura ambiente (Las pruebas de estabilidad demuestran que este producto se puede enviar sin medidas de refrigeración.)

Preparación de soluciones madre

Actividad biológica

Descripción Torin 1 es un potente inhibidor de mTORC1/2 con IC50 de 2 nM/10 nM en ensayos libres de células; exhibe una selectividad 1000 veces mayor para mTOR que para PI3K.
Objetivos
mTORC1
(Cell-free assay)
mTOR
(Cell-free assay)
DNA-PK
(Cell-free assay)
mTORC2
(Cell-free assay)
p110γ
(Cell-free assay)
Ver más
2 nM 4.32 nM 6.34 nM 10 nM 171 nM
In vitro Torin1 inhibe la fosforilación de los sustratos de mTORC1 y mTORC2 en células a concentraciones de 2 y 10 nM, respectivamente. Además, Torin1 exhibe una selectividad 1000 veces mayor para mTOR sobre PI3K (EC50 = 1800 nM) y exhibe una selectividad de unión 100 veces mayor en relación con otras 450 proteínas quinasas. Torin1 provoca la detención del ciclo celular a través de un mecanismo resistente a rapamicina que también es independiente de mTORC2. Torin1 altera los fenotipos dependientes de mTORC1 de manera más completa que la rapamicina. Las funciones de mTORC1 resistentes a rapamicina son necesarias para la traducción dependiente de la caperuza. En un estudio reciente, se informa que Torin1 aumenta la secreción de neurotensina y la expresión génica a través de la activación de la vía MEK/ERK/c-Jun en la línea celular endocrina humana BON.
In vivo Torin1 es eficaz a una dosis de 20 mg/kg en un modelo de xenoinjerto U87MG y demuestra una buena inhibición farmacodinámica de los efectores posteriores de mTOR en tejidos tumorales y periféricos.

Protocolo (de referencia)

Ensayo de quinasa:[1]
  • Ensayos de quinasa in vitro de mTORC1 y mTORC2

    Para producir mTORC1 soluble, se generan líneas celulares HEK-293T que expresan de forma estable Raptor con etiqueta FLAG en el N-terminal utilizando retrovirus MSCV pseudotipado con el virus de la estomatitis vesicular G. Para mTORC2, se generan células HeLa similares que expresan de forma estable Protor-1 con etiqueta FLAG en el N-terminal. Ambos complejos se purifican mediante la lisis de células en 50 mm HEPES, pH 7,4, 10 mm pirofosfato de sodio, 10 mm β-glicerofosfato de sodio, 100 mm NaCl, 2 mm EDTA, 0,3% CHAPS. Las células se lisan a 4 °C durante 30 min, y la fracción insoluble se elimina mediante microcentrifugación a 13.000 rpm durante 10 min. Los sobrenadantes se incuban con agarosa de anticuerpo monoclonal FLAG-M2 durante 1 h y luego se lavan tres veces con tampón de lisis y una vez con tampón de lisis que contiene una concentración final de 0,5 M NaCl. El mTORC1 purificado se eluye con 100 μg/mL de péptido 3×FLAG en 50 mm HEPES, pH 7,4, 100 mm NaCl. El eluato se puede alicuar y almacenar a -80 °C. Los sustratos S6K1 y Akt1 se purifican. Los ensayos de quinasa se realizan durante 20 min a 30 °C en un volumen final de 20 μL que consiste en el tampón de quinasa (25 mm HEPES, pH 7,4, 50 mm KCl, 10 mm MgCl2, 500 μm ATP) y 150 ng de S6K1 o Akt1 inactivos como sustratos. Las reacciones se detienen mediante la adición de 80 μL de tampón de muestra y se hierven durante 5 min. Las muestras se analizan posteriormente mediante SDS-PAGE e inmunoblotting.

Ensayo celular:[1]
  • Líneas celulares

    MEFs

  • Concentraciones

    ~250 nM

  • Tiempo de incubación

    4 days

  • Método

    Cell viability is assessed with the CellTiter-Glo Luminescent Cell Viability Assay. On Day 0, 96-well plates are seeded with 500 cells per well and grown overnight. On Day 1, cells are treated with the appropriate compounds and subsequently analyzed on Days 3-5. For analysis, plates are incubated for 60 min at room temperature; 50 μL of CellTiter-Glo reagent is added to each well, and plates are mixed on an orbital shaker for 12 min. Luminescence is quantified on a standard plate luminometer.

Estudio en animales:[2]
  • Modelos animales

    U87MG xenograft model

  • Dosificaciones

    20 mg/kg

  • Administración

    Administered via i.p. once daily

Referencias

  • https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/19150980/
  • https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20860370/
  • https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21508335/
  • https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20508131/

Validación de productos por parte del cliente

Huh-7.5 cells were treated with increasing concentration of Torin 1, a known autophagy inducer, and the autophagy response was assessed by measuring LC3II and p62 levels.

Datos de [ Am J Pathol , 2014 , 184(1), 214-29 ]

Flag-tagged SENP3 was immunoprecipitated from HeLa cells and used for in vitro phosphorylation assay with [32P]ATP with either the mock-treated or Torin1-treated mTOR/Raptor/MLST8 complex. (Upper) The samples then were subjected to SDS-PAGE, followed by autoradiography. mTOR autophosphorylation is indicated by an asterisk. (Lower) Immunopurified SENP3 was monitored by Western blotting with anti-Flag antibody.

Datos de [ Mol Cell Biol , 2014 , 34(24), 4474-84 ]

Representative Western blots showing LC3 in PP242 (PP) or Torin1 (Tor) treated HepG2 cells. HepG2 cells were treated with 10 uM PP242 or 0.1 uM Torin1 for 24 h.

Datos de [ Biochem Biophys Res Commun , 2014 , 10.1016/j.bbrc.2014.05.047 ]

Bone marrow derived macrophages were pre-treated with 10nM Torin 1 for 1h prior to LPS treatment (100 ng/ml).  TNF-a production was analyzed 24h later.

, , Lim Hsiu Kim, Lina from National University of Singapore

Sellecks Torin 1 Ha sido citado por 259 Publicaciones

GPNMB disrupts SNARE complex assembly to maintain bacterial proliferation within macrophages [ Cell Mol Immunol, 2025, NONE] PubMed: 40038549
DMXL1 promotes recruitment of V1-ATPase to lysosomes upon TRPML1 activation [ Nat Struct Mol Biol, 2025, 10.1038/s41594-025-01581-x] PubMed: 40527988
RNA G-quadruplexes control mitochondria-localized mRNA translation and energy metabolism [ Nat Commun, 2025, 16(1):3292] PubMed: 40195294
S100P is a ferroptosis suppressor to facilitate hepatocellular carcinoma development by rewiring lipid metabolism [ Nat Commun, 2025, 16(1):509] PubMed: 39779666
USP5 stabilizes YTHDF1 to control cancer immune surveillance through mTORC1-mediated phosphorylation [ Nat Commun, 2025, 16(1):1313] PubMed: 39900921
Dual mechanism of autophagy gene repression by PHF23 and therapeutic potential of its inhibition in protein aggregation disorders [ Nucleic Acids Res, 2025, 53(22)gkaf1317] PubMed: 41359382
Excessive autophagic degradation of MYLK3 causes sunitinib-induced cardiotoxicity [ Autophagy, 2025, 1-20.] PubMed: 40568844
ESCRT III-mediated lysosomal repair improve renal tubular cell injury in cisplatin-induced AKI [ Autophagy, 2025, 1-18.] PubMed: 40152606
TBK1 is a signaling hub in coordinating stress-adaptive mechanisms in head and neck cancer progression [ Autophagy, 2025, 1-23.] PubMed: 40114316
S-palmitoylation modulates ATG2-dependent non-vesicular lipid transport during starvation-induced autophagy [ EMBO J, 2025, 44(9):2596-2619] PubMed: 40128367

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