Lucigenin

N.º de catálogoS6824 Lote:S682401

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Datos técnicos

Fórmula

C28H22N4O6
Peso molecular 510.5 Número CAS 2315-97-1
Solubilidad (25°C)* In vitro DMSO 20 mg/mL (39.17 mM)
Water Insoluble
Ethanol Insoluble
In vivo (Agregue los solventes al producto individualmente y en orden.)
Homogeneous suspension
CMC-NA
≥5mg/ml Taking the 1 mL working solution as an example, add 5 mg of this product to 1 ml of CMC-Na solution, mix evenly to obtain a homogeneous suspension with a final concentration of 5 mg/ml.
* <1 mg/ml significa ligeramente soluble o insoluble.
* Tenga en cuenta que Selleck prueba la solubilidad de todos los compuestos internamente, y la solubilidad real puede diferir ligeramente de los valores publicados. Esto es normal y se debe a ligeras variaciones entre lotes.
* Envío a temperatura ambiente (Las pruebas de estabilidad demuestran que este producto se puede enviar sin medidas de refrigeración.)

Preparación de soluciones madre

Actividad biológica

Descripción Lucigenin (NSC-151912, L-6868) es una sonda fluorescente que exhibe una fluorescencia verde azulada en presencia de radicales anión superóxido y cloruro generados endógenamente en las células.
Objetivos
superoxide anion radical chloride
In vitro

1.1 Preparación de la solución madre
Disolver 1 mg de Lucigenin en 0,1919 mL de DMSO para obtener 10 mM de este compuesto.
Nota: Se recomienda almacenar la solución madre a -20 0C -80 0C lejos de la luz y evitar ciclos repetitivos de congelación-descongelación.
1.2 Preparación de la solución de trabajo de este compuesto
Diluir la solución madre en medio de cultivo celular sin suero o PBS para obtener 5-10 5M de esta solución química de trabajo.
Nota: Ajustar la concentración de esta solución química de trabajo de acuerdo con la situación real.
Tinción celular
2.1 Preparación de células.
Para células en suspensión: Centrifugar a 1000 g a 40C durante 3-5 minutos y luego desechar el sobrenadante. Lavar dos veces con PBS, 5 minutos cada vez.
Para células adherentes: Desechar el medio de cultivo celular y añadir tripsina para disociar las células y hacer una suspensión unicelular. Centrifugar a 1000 g a 40C durante 3-5 minutos y luego desechar el sobrenadante. Lavar dos veces con PBS, 5 minutos cada vez.
2.2 Añadir 1 mL de la solución de trabajo de este compuesto y luego incubar a temperatura ambiente durante 15 minutos.
2.3 Centrifugar a 400 g a 40C durante 3-4 minutos y luego desechar el sobrenadante.
2.4 Lavar dos veces con PBS, 5 minutos cada vez.
2.5 Resuspender las células con medio de cultivo celular sin suero o PBS, y luego detectar con un microscopio de fluorescencia.

Protocolo (de referencia)

Referencias

  • https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/9442038/

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