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Hoechst 33342 Dyes Químico

Cat. No.: S0485

Hoechst 33342 (Pibenzimol, bisBenzimida H 33342, HOE 33342, HO342) es un colorante fluorescente permeable a las membranas que puede teñir células vivas. Este compuesto se une a las regiones ricas en adenina y timina del ADN en el surco menor y aumenta considerablemente la fluorescencia. Permite visualizar fácilmente el núcleo en las células en interfase y los cromosomas en las células mitóticas.
Hoechst 33342 Dyes Químico Chemical Structure

Estructura química

Peso molecular: 452.55

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Control de calidad (Quality Control)

Lote: Pureza: 99.94%
99.94

Información química, almacenamiento y estabilidad (Chemical Information, Storage & Stability)

Peso molecular 452.55 Fórmula

C27H28N6O

 Almacenamiento (Desde la fecha de recepción) 3 years -20°C powder
Nº CAS 23491-52-3 -- Almacenamiento de soluciones madre

Sinónimos Pibenzimol, bisBenzimide H 33342, HOE 33342, HO342 Smiles CCOC1=CC=C(C=C1)C2=NC3=C(N2)C=C(C=C3)C4=NC5=C(N4)C=C(C=C5)N6CCN(CC6)C

Solubilidad (Solubility)

In vitro
Lote:

Water : 90 mg/mL

DMSO : 10 mg/mL (22.09 mM)
(El DMSO contaminado con humedad puede reducir la solubilidad. Usar DMSO fresco y anhidro.)

Ethanol : Insoluble

Calculadora de Molaridad

Masa Concentración Volumen Peso molecular
Calculadora de Dilución Calculadora de Peso Molecular

In vivo
Lote:

Calculadora de formulación in vivo (Solución clara)

Paso 1: Introduzca la información a continuación (Recomendado: Un animal adicional para tener en cuenta la pérdida durante el experimento)

mg/kg g μL

Paso 2: Introduzca la formulación in vivo (Esto es solo la calculadora, no la formulación. Por favor, contáctenos primero si no hay una formulación in vivo en la sección de Solubilidad.)

% DMSO % % Tween 80 % ddH2O
%DMSO %

Resultados del cálculo:

Concentración de trabajo: mg/ml;

Método para preparar el líquido maestro de DMSO: mg fármaco predissuelto en μL DMSO ( Concentración del líquido maestro mg/mL, Por favor, contáctenos primero si la concentración excede la solubilidad del DMSO del lote del fármaco. )

Método para preparar la formulación in vivo: Tomar μL DMSO líquido maestro, luego añadirμL PEG300, mezclar y clarificar, luego añadirμL Tween 80, mezclar y clarificar, luego añadir μL ddH2O, mezclar y clarificar.

Método para preparar la formulación in vivo: Tomar μL DMSO líquido maestro, luego añadir μL Aceite de maíz, mezclar y clarificar.

Nota: 1. Por favor, asegúrese de que el líquido esté claro antes de añadir el siguiente disolvente.
2. Asegúrese de añadir el (los) disolvente(s) en orden. Debe asegurarse de que la solución obtenida, en la adición anterior, sea una solución clara antes de proceder a añadir el siguiente disolvente. Se pueden utilizar métodos físicos como el vórtice, el ultrasonido o el baño de agua caliente para ayudar a la disolución.

Mecanismo de acción (Mechanism of Action)

Targets/IC50/Ki
DNA
In vitro

1.1 Preparación de la solución madre
Disuelva 10 mg de Hoechst 33342 en 5 ml de DMSO.
Nota: Se recomienda almacenar la solución madre a 4 ℃ o -20 ℃, lejos de la luz, y evitar ciclos repetitivos de congelación-descongelación.
1.2 Preparación de la solución de trabajo de este
compuesto Diluir la solución madre en medio de cultivo celular sin suero o PBS para obtener una concentración final de 10 μg/mL de esta solución de trabajo química.
Nota: Ajuste la concentración de esta solución de trabajo del reactivo según la situación real.
1. Tinción
celular 2.1 Células en suspensión (placa de 6 pocillos)
a. Centrifugue a 1000 g a 4 ℃ durante 3-5 minutos y luego deseche el sobrenadante. Lave dos veces con PBS, 5 minutos cada vez. La densidad celular es de 1×106/mL.
b. Añada 1 ml de solución de trabajo y, a continuación, incube a temperatura ambiente durante 3-10 minutos.
c. Centrifugue a 400 g a 4 ℃ durante 3-4 minutos y, a continuación, deseche el sobrenadante.
d. Lave dos veces con PBS, 5 minutos cada vez.
e. Resuspender las células con medio de cultivo celular sin suero o PBS. Observación mediante microscopía de fluorescencia o citometría de flujo.
2.2 Células adherentes
a. Cultivar las células adherentes en cubreobjetos estériles.
b. Retirar el cubreobjetos del medio y aspirar el exceso de medio.
c. Añadir 100 μL de solución de trabajo, agitar suavemente para cubrir completamente las células y, a continuación, incubar a temperatura ambiente durante 3-10 minutos.
d. Lavar dos veces con medio, 5 minutos cada vez. Observación mediante microscopía de fluorescencia o citometría de flujo.
Referencias